DIRECCIÓN DEL CURSO: Dr. Guillermo García-Effron (Cátedra de Parasitología y Micología y Laboratorio de Micología y Diagnóstico Molecular – CONICET – UNL).
COORDINADOR: : Dra. María Soledad Gamarra (Cátedra de Parasitología y Micología y Laboratorio de Micología y Diagnóstico Molecular – CONICET – UNL).
Docentes/Colaboradores del curso:
Dr. Guillermo García-Effron: Bioquímico (UNL), Dr. en Microbiología y Parasitología (Univ. Complutense-Madrid), Postdoctorado I (Hospital 12 de Octubre Madrid), Postdoctorado II (Rutgers University – EEUU), Investigador CONICET, Profesor Asociado Cátedra de Parasitología y Micología (UNL). Responsable del Laboratorio de Micología y Diagnóstico Molecular (CONICET).
Dra. María Soledad Gamarra: Bioquímica (UNL), Dra. en Biología Molecular (Univ. Complutense-Madrid), Postdoctorado (Rutgers University – EEUU), Especialista Universitaria en Micología y Parasitología (UNR), Investigador UNL, Profesor Adjunto Cátedra de Parasitología y Micología (UNL). Investigadora del Laboratorio de Micología y Diagnóstico Molecular (CONICET).
Dra. María Gabriela Latorre: Bioquímica (UNL), Dra. En Ciencias Biológicas (UNL), Profesor Adjunto Cátedra de Parasitología y Micología y Jefe de Trabajos Prácticos Cátedra de Microbiología General (UNL).
Dra. Catiana Duduik: Bioquímica (UNL), Dra. en Ciencias Biológicas (UNL), Especialista Universitaria en Micología y Parasitología (UNR), Auxiliar de Trabajos Prácticos Cátedra de Parasitología y Micología (UNL). Postdoctorando CONICET en Laboratorio de Micología y Diagnóstico Molecular.
Dr. Matías Cabeza: Licenciado en Biotecnología (UNL), Dr. en Ciencias Biológicas (UNL), Auxiliar de Trabajos Prácticos Cátedra de Parasitología y Micología (UNL). Investigador Postdoctoral CONICET en el Laboratorio de Micología y Diagnóstico Molecular.
Dra. María Sol Barbagelata: Bioquímica (UNL), Licenciada en Biotecnología (UNL), Dra. en Ciencias Biológicas (UBA), Jefe de Trabajos Prácticos Cátedra de Parasitología y Micología (UNL), Auxiliar de Trabajos Prácticos Cátedra de Tecnología Inmunológica (UNL), Docente de UADER.
Bioq. Florencia Leonardelli: Bioquímica (UNL), Auxiliar de Trabajos Prácticos Cátedra de Parasitología y Micología (UNL). Doctorando CONICET en el Laboratorio de Micología y Diagnóstico Molecular.
Bioq. Laura Theill: Bioquímica (UNL), Bioquímica Hospital Iturraspe Santa Fe. Auxiliar de Trabajos Prácticos Cátedra de Parasitología y Micología (UNL). Doctorando en el Laboratorio de Micología y Diagnóstico Molecular.
PROGRAMA ANALÍTICO DEL CURSO:
Teoría
Conceptos básicos de biología molecular
DNA. Estructura primaria. Bases nitrogenadas. Doble hélice. Similitud y complementariedad. Flujo de la información genética. Concepto de gen. Familias de genes. RNA ribosomal (RNAr); RNA de transferencia (RNAt); organización génica. Reparación del DNA. Mutaciones: deleciones, inserciones, sustituciones.
Bioinformática
Búsqueda de genes, diseño de primers, comparación de genes, traducción, análisis de secuencias, blast, secuencias consenso, clustal W. Programas gratuitos y comerciales de bioinformática: Bioedit y Vector.
Técnicas moleculares I
Extracción y purificación de DNA genómico y plasmídico. Corridas electroforéticas. Cuantificación de DNA. Extracción y purificación de RNA. Cuantificación de RNA. Retrotranscripción.
Técnicas moleculares II
PCR clásica. Modificaciones de la PCR clásica. Nested PCR. PCR astringente. PCR multiplex. PCR RFLP. PCR con control de inhibidores. Real Time PCR. Sondas Taqman, Molecular beacons, etc. Cuantificación de la expresión génica. Secuenciación Sanger. Minisecuenciación. Clonado.
Aplicaciones
Herramientas moleculares aplicadas a Microbiología clínica.
Aplicación de las técnicas moleculares: Ventajas, desventajasy perspectivas a futuro. Diagnóstico molecular de infecciones. Estudio brotes. Taxonomía molecular en Micología. Métodos. Uso de la biología molecular en el estudio de los mecanismos de acción y resistencia a los antimicrobianos. Aplicación de herramientas de diagnóstico molecular en la evaluación rápida de la resistencia a los antibacterianos y antifúngicos.
Herramientas moleculares aplicadas a patología humanas. Ejemplos de uso de biología molecular en el diagnóstico de anemias y leucemias.
TRABAJOS PRACTICOS
1- Bioinformática: Búsqueda de genes, BLAST, diseño de primers, lectura de secuencias, etc.
2- Extracción de DNA bacteriano y fúngico.
3- PCR clásica, multiplex, RFLP, PCR astringente (detección de mutaciones) y Real time PCR.
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